摘要:同工酶是指能催化同一種化學反應,但其酶蛋白本身的分子結構組成卻有所不同的一組酶。利用聚丙烯酰胺凝膠電泳測定同工酶,方法簡便,靈敏度高,重現性強,測定結果便于觀察、記錄和保存。本試驗采用連續PAGE法分離LDH及其同工酶,并掌握電泳技術的原理、方法、裝置、凝膠配制等知識,熟悉主要的操作過程,同時對同工酶有一個感性的認識。 關鍵字:聚丙烯酰胺凝膠電泳、乳酸脫氫酶同工酶、分離
帶電粒子在電場中向與其自身帶相反電荷的電極移動,這種現象稱為電泳。近幾十年來,電泳作為一項有效的分析、分離和制備技術發展很快,在生產、科研和醫療工作中得到了廣泛應用。用電泳技術分離、分析蛋白質、酶、核酸等生物大分子,有較高的分辨率,目前已成為生物科學研究中必不可少的手段之一。 聚丙烯酰胺凝膠電泳是以聚丙烯酰胺凝膠作為載體的一種區帶電泳。這種凝膠是以丙烯酰胺單體(Acrylamide,簡寫為Acr)和交聯劑N,N'-甲叉雙丙烯酰胺(N,N'-Methylena Bisacrylamide,簡寫為Bis)在催化劑的作用下聚合而成的。 聚丙烯酰胺凝膠電泳可分為連續法和不連續法兩種。從凝膠形式上可分為柱式和板式。裝凝膠柱于直立的玻璃管中進行電泳分離,成為柱式電泳,此法制備凝膠方便,樣品需要量少,凝膠條便于長期保存,板式電泳的優點是能在同一凝膠板上、同一操作條件下,同時比較多個樣品,還可作雙向電泳,便于利用各種測定方法,尤其便于進行放射自顯影操作。 聚丙烯酰胺凝膠電泳過程中,除去一般電泳的電荷效應以外,還有兩種物理效應:1. 凝膠對樣品的篩選效應:顆粒小、呈球形的樣品分子移動快,顆粒大的、形狀不規則的分子通過凝膠空洞時的阻力大,移動慢。2. 不連續系統對樣品的濃縮效應:由于柱式不連續體系的四個不連續性,導致樣品的在電泳開始時就得到濃縮,然后分離。不連續電泳系統所具備的電荷效應、分子篩選效應和濃縮效應大大提高了它的分辨率。 乳酸脫氫酶(1actatedehytrogenase.LDH)及其同工酶(isoenzyme)是糖代謝中的一種很重要的酶,它催化丙酮酸與乳酸的相互轉化。 LDH是發現最早又研究最多的具有同工酶的一組酶,由于同工酶的分子結構不同,電泳遷移率不同,因此電泳法可將其分開。在哺乳動物中,LDH是由兩種亞基(H亞基和M亞基)通過不同的組合形成四聚體,共有五種同工酶,LDH1、LDH2、LDH3、LDH4、LDH5。這些同工酶在不同器官中的分布及含量不同,各器官都有自己特定的同工酶譜。如心肌中LDHl活性最高,肝臟中LDH5活性最高。正常情況下,血清中LDH同工酶活性較低,多半來自紅細胞的滲出和釋放,經電泳分離,可呈現特定的同工酶譜。 LDH同工酶經提純后可分為5條區帶,從陽極到陰極的順序依次為LDH1、LDH2、LDH3、LDH4、LDH5。他們均具有LDH催化活性,是一種LDH同工酶。它是由H亞基和M亞基按不同比例組成的四聚體,廣泛的分布于動物的各種組織以及微生物和植物中。這種同工酶通過不連續聚丙烯酰胺凝膠電泳法可被分離。若通過連續聚丙烯酰胺凝膠電泳則只會出現帶狀條紋,不會分離。 本試驗采用聚丙烯酰胺凝膠電泳連續法,觀察肝、心、腦、肌、血清5種組織中同工酶的含量,若采用不連續法則可以是這些物質中的同工酶得到分離。
試劑及器材
材料 動物未溶血新鮮血清,動物組織提取液(組織重量與組織云將緩沖液體積比為1:5或1:10)
1.2 試劑 1.2.1 PAGE有關試劑 凝膠貯液、電極緩沖液、AP溶液 1.2.2 LDH同工酶染色貯存液 5mg/mL氧化性輔酶1溶液 1mol/L乳酸鈉溶液 0.1mol/L氯化鈉溶液 1mg/mLPMS溶液 1mg/mL氯化硝基四氮唑藍(NBT)溶液 0.5mol/L pH=7.5磷酸鹽緩沖液 1.2.3 制備組織勻漿緩沖液:0.01mol/L pH=6.5磷酸鹽緩沖液
1.3 器材 穩壓、穩流電泳儀,垂直板電泳槽(微型),移液管,移液槍,燒杯,培養皿,恒溫水浴,凝膠成象儀。
1.4 步驟
1.4.1. 凝膠配置
試劑名稱 配制20ml不同濃度分離膠所需各種試劑用量/ml 配制10ml濃縮膠所需試劑用量 5% 7.5% 10% 15% 3% 分離膠貯液 3.33 5.00 6.66 分離膠緩沖液 2.50 2.50 2.50 2.50 1%TEMED 2.00 2.00 2.00 2.00 1.00 混勻后,置真空干燥器中,抽氣10min 10% 0.10 0.10 0.10 0.10 0.05
1.4.2. 灌膠 迅速在兩玻璃板的間隙中灌注丙烯酰胺溶液。注滿后,立即在分離膠溶液中插入干凈的梳子,小心避免混入氣泡,再加入濃縮膠溶液以充滿梳子間的空隙,將凝膠垂直放置于室溫下。濃縮膠聚合完成后,小心溢出梳子。把凝膠固定于電泳裝置上,上下槽各加入Tris-甘氨酸電極緩沖液。如凝膠底部兩玻璃板之間有氣泡,必須設法排出。
1.4.3. 預電泳 為防止LDH及其同工酶受凝膠聚合后殘留物的影響,引起酶的鈍化或其他人為效應,再加樣前,應進行預電泳,電泳條件20mA,0.5h,關閉電源后準備加樣。
1.4.4. 加樣 取10—20μl血清或組織勻漿,加體積40%蔗糖混勻后,用移液槍吸取20—30μl樣品,小心加在凹形樣品槽內。
1.4.5. 電泳 加樣后打開電源,將電流調至10mA,待樣品進入分離膠后,改為20—25mA,當溴酚藍前沿距離橡膠眶下緣1-20cm時,將電流調為0,關閉電源。
1.4.6. 染色脫色與制干板 貯存液 NAD 乳酸鈉 NaCl NBT PMS 磷酸緩沖液 用量/ml 4.0 2.5 2.5 10.0 1.0 5.0 電泳結束后,取下凝膠膜,刮下硅橡膠框,撬開玻璃板,在凝膠右下角切出一小角作為標記,小心取出凝膠板,將其放在盛有染色液的培養皿中,置37度水浴中保溫15-30min,待LDH同工酶呈現藍紫色區帶,即可用蒸餾水洗去染色劑,加入脫色液終止酶反應并使底色脫凈,用凝膠成像儀拍照。 試驗結果
結果討論 根據以上試驗結果,可以看出在肝、心肌、腦、骨骼肌、血清5種組織中同工酶中,同工酶LDH1、LDH2、LDH3、LDH4、LDH5的含量有所不同,心肌中一LDH1含量最高,骨骼肌及肝中的LDH5最高。
本試驗的影響因素以及做好試驗的關鍵是: 制膠時應注意不能產生起氣泡。插入梳子時應傾斜插入,以免產生氣泡 電泳時電流不要太高,應防止熱效應引起LDH失活,電泳應在冰浴中進行。 LDH同工酶活性染色時間不要太長,一般以15—30min為宜,當大多數條帶均呈藍紫色時即可中止染色。 電泳后應迅速撥膠,防止色帶擴散。 所用器材必須清潔。特別是制備凝膠柱所用的玻璃管每次用后必須用洗液浸泡,再常規清洗,否則凝膠剝離困難。 電泳完畢后,上下槽電極緩沖液不可混合,因離子強度和pH值都已發生改變。 丙烯酰胺和甲叉雙丙烯酰胺是神經性毒劑,對皮膚有刺激作用,應避免直接接觸。 同工酶的染色原理: 將聚丙烯酰胺凝膠電泳分離的同工酶凝膠條,加上酶的底物乳酸,則可催化底物脫氫生成丙酮酸。同時生成還原型NADH+H+,它可使吩嗪硫酸甲酯(PMS)還原,后者又使淺黃色的氯化硝基四氮唑藍(NBT)還原成藍紫色,從而顯示各同工酶區帶。其反應式如下: 反應產生的藍紫色即還原型NBT含量與酶活力成正比,可直接觀察顏色的深淺進行分析,也可將染色的膠條用光密度掃描儀進行掃描,根據波峰計算出各同工酶的百分含量。
LDH同工酶的應用現狀: LDH同工酶的分離及測定在臨床上有重要意義。正常情況下,血清中LDH同工酶活性較低,電泳呈現其特定的同工酶譜。當某組織受損時,該組織中的LDH可釋放到血液中,使血清 LDH的總活性升高,但酶的總活性升高幅度不一定與有關臟器(如心或肝等)的病損程度相一致,故測定酶的總活性對患病器官的鑒別意義不大。但LDH同工酶在不同器官組織中的分布及含量不同,有關的器官組織發生損傷時,可反映在同工酶譜的變化上,故測定LDH同工酶可有助于受損部位的鑒別診斷。如肝臟疾患時,血清中LDH;升高;而在心肌受損時,血清中 LDH,升高,因此電泳分離同工酶,經光密度掃描儀掃描,測出各同工酶的百分含量,不但提高了診斷的靈敏度,而且對病變器官的鑒別也有重要意義。 此項測定目前常用于診斷心肌梗塞,肝病和某些惡性腫瘤。在診斷心肌梗塞時雖然活性增高的時間比 CK要遲,陽性率也較低,但持續時間較CK長。 1.心肌疾病:心肌梗塞時LDH增高,心肌梗塞發病后8-10小時開始上升,2-3天達高峰,持續1-2周恢復正常。若LDH增高后恢復遲緩,或在病程中再次升高者,提示梗塞范圍擴大,預后不良。 2.肝臟疾。杭毙愿窝谆蚵愿窝谆顒悠贚DH常顯著或中度增高,其靈敏度低于ALT,肝癌時LDH活性明顯增高,尤其轉移性肝癌時LDH活性增高更明顯。 3.血液病:白血病、貧血、惡性淋巴瘤等LDH活性增高。 4.其它:肌營養不良、橫紋肌損傷、胰腺炎、肺梗塞等LDH活性也增高。 由于LDH存在于很多組織中,其總活性測定不能特異地反映某一組織或器官的情況,為了進一步了解某一器官的病變,可測定LDH同工酶有助于區別不同組織來源。 人血清中含有五種LDH同工酶,它們是由H(心肌型)和M[骨焰肌型)兩類亞基組成的不均一的五種四聚體。按其在瓊脂電泳中泳動的快慢,由正極向負極依次為LDHl、LDH2、LDH3、LDH4、LDH5。心臟、腦、紅細胞等富含LDHl和LDH2,而肝臟及骨鉻肌則含LDH4和LDH5最多。因此測定LDH同工醇有助于病變器官的定位。
參考文獻: ① 劉箭 生物化學實驗教程 科學出版社 ② 韋和平 生物化學實驗與指導 中國醫藥科學出版社
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